[發(fā)明專利]基于磁性熒光探針的食品大腸桿菌菌落可視化檢測(cè)及自動(dòng)化計(jì)數(shù)方法有效
| 申請(qǐng)?zhí)枺?/td> | 201910454320.7 | 申請(qǐng)日: | 2019-05-29 |
| 公開(kāi)(公告)號(hào): | CN110261608B | 公開(kāi)(公告)日: | 2022-03-22 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 鄒小波;胡雪桃;石吉勇;李文亭;李艷肖;黃曉瑋;李志華;徐藝偉;李亞惠 | 申請(qǐng)(專利權(quán))人: | 江蘇大學(xué) |
| 主分類號(hào): | G01N33/569 | 分類號(hào): | G01N33/569;G01N33/58;G06T7/136;G06T7/187;G06T5/00 |
| 代理公司: | 暫無(wú)信息 | 代理人: | 暫無(wú)信息 |
| 地址: | 212013 江*** | 國(guó)省代碼: | 江蘇;32 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 基于 磁性 熒光 探針 食品 大腸桿菌 菌落 可視化 檢測(cè) 自動(dòng)化 計(jì)數(shù) 方法 | ||
1.基于磁性熒光探針的食品大腸桿菌菌落可視化檢測(cè)及自動(dòng)化計(jì)數(shù)方法,其特征在于,步驟如下:
步驟1、磁性納米微球的制備,記為Fe3O4@SiO2-cDNA;
六水氯化鐵、三水合乙酸鈉和檸檬酸三鈉分別加入乙二醇中,40~60℃下磁力攪拌8~12h,將混合液轉(zhuǎn)入到反應(yīng)釜中,在180~200℃條件靜置8~16 h,得到反應(yīng)的混合液,經(jīng)去離子水和乙醇各洗滌3次,磁性分離得到的產(chǎn)物在50~70℃下真空干燥6~12 h,即可得到Fe3O4納米顆粒;所述六水氯化鐵、三水合乙酸鈉、檸檬酸三鈉和乙二醇的用量比為10~100 g: 20~200 g:2~20 g:1 L;
稱取Fe3O4納米顆粒溶解于乙醇A和水的混合溶液中,超聲震蕩15 min~60 min形成均勻溶液,然后將氨水加入到混合液中,超聲震蕩30 min~120 min,最后將正硅酸乙酯加入到混合液中,超聲震蕩45 min~120 min,將得到的混合液經(jīng)去離子水和乙醇B各洗滌3次,磁性分離的產(chǎn)物在50~70℃真空干燥箱中干燥6~12 h,即可得到Fe3O4@SiO2;所述Fe3O4、氨水、正硅酸乙酯、乙醇A和水的用量比為4~20 g:0.05~0.2 L:0.01~0.1 L:1~5 L:1~2 L;
將Fe3O4@SiO2加入到甲苯和氨丙基三甲氧基硅烷中,在100 ~ 150℃條件下攪拌20~30h,將得到的混合液經(jīng)去離子水和乙醇各洗滌3次,磁性分離的產(chǎn)物在50 ~70℃真空干燥箱中干燥5~12 h,即可得到Fe3O4@SiO2-NH2;所述Fe3O4@SiO2、甲苯和氨丙基三甲氧基硅烷加入的用量比為10~50 g:5~15 L: 1~2 L;
將羧基修飾的適配體互補(bǔ)鏈加入到EDC和NHS的混合液中,記為EDC/NHS溶液,充分震蕩15~45 min;隨后將得到的Fe3O4@SiO2-NH2加入EDC/NHS溶液中震蕩2~8 h;得到的產(chǎn)物經(jīng)過(guò)磁性分離并經(jīng)過(guò)多次洗滌,即可得到磁性納米微球Fe3O4@SiO2-cDNA;
在Fe3O4@SiO2-cDNA中,F(xiàn)e3O4粒徑范圍為50~200 nm,SiO2厚度為10~50 nm;所述EDC和NHS溶液的濃度均為20 mg/mL,且用量比為3:1;所述羧基修飾的適配體互補(bǔ)鏈的濃度范圍為15~35 μmol/L;所述Fe3O4@SiO2-NH2和EDC/NHS溶液的用量比為0.5~0.2 mg:1 mL;羧基修飾的適配體互補(bǔ)鏈,即cDNA的序列為COOH-TTAGCAAAGT AGCGTGCACT TTTG;
步驟2、熒光碳量子點(diǎn)的制備,記為aptamer-CQDs;
將檸檬酸、濃硫酸和乙二醇混合攪拌后,置于微波爐中加熱1~5 min,獲得碳量子點(diǎn)溶液;碳量子點(diǎn)溶液經(jīng)離心、透析去除碳量子點(diǎn)溶液中的雜質(zhì),得到表面富含羧基的熒光碳量子點(diǎn);將EDC/NHS混合液加入到熒光碳量子點(diǎn)溶液中攪拌10~20 min,隨后加入氨基修飾的大腸桿菌適配體并攪拌2~5 h,得到特異性熒光碳量子點(diǎn),即為aptamer-CQDs;
所述檸檬酸、濃硫酸、乙二醇的用量比為0.4~0.1 g:0.5~0.05 mL:1 mL;
所述離心的條件為8000~15000 rpm,10~20 min;所述透析過(guò)程中透析袋截留分子量為1000 KD;
所述EDC和NHC溶液的濃度均為20 mg/L,EDC和NHC溶液的體積為(1~3): 1;所述碳量子點(diǎn)溶液和EDC/NHC溶液的體積比為1~5:1~2;
所述大腸桿菌適配體的終濃度為15~35 μmol/L,大腸桿菌適配體的序列為GCAATGGTACGGTACTT CCCCATGAGT GTT GTGAAAT GTT GGGACACTAG GTGGCATAGAGCCGCA AAAGTGCACG CTACTTTGC TAA-NH2;
步驟3、磁性熒光探針Fe3O4@SiO2-CQDs的制備,將步驟1中得到的Fe3O4@SiO2-cDNA和步驟2中得到的aptamer-CQDs常溫下混合孵育,磁性分離除去多余的Fe3O4@SiO2-cDNA,獲得磁性熒光探針Fe3O4@SiO2-CQDs;
步驟4、食品中菌株菌落的培養(yǎng);對(duì)食品樣品稀釋后,制備十倍遞增系列稀釋樣品勻液,稀釋梯度分別為10-(p+1),10-(p+2),10-(p+3),……,10-(p+i),其中p為大于或等于零的整數(shù),i為大于零的整數(shù);然后對(duì)不同梯度的樣品稀釋勻液進(jìn)行涂布平板培養(yǎng),每個(gè)梯度接種n個(gè)固體培養(yǎng)基平板,n為大于零的整數(shù);每個(gè)平板加入菌液進(jìn)行涂布,然后將平板倒置于一定環(huán)境中進(jìn)行培養(yǎng),培養(yǎng)后得到了不同稀釋梯度的食品菌株菌落平板;
步驟5、大腸桿菌菌落的快速識(shí)別; 將步驟3中制備的磁性熒光探針Fe3O4@SiO2-CQDs加入到步驟4中的不同稀釋梯度的食品菌株菌落平板中,靜置一段時(shí)間;若菌落為大腸桿菌時(shí),則大腸桿菌會(huì)與aptamer-CQDs結(jié)合,導(dǎo)致Fe3O4@SiO2-cDNA和aptamer-CQDs分離;若菌落不是大腸桿菌,F(xiàn)e3O4@SiO2-cDNA和aptamer-CQDs不會(huì)分離,以Fe3O4@SiO2-CQDs的形式存在;
用磁鐵吸附將菌落平板中的Fe3O4@SiO2-cDNA和Fe3O4@SiO2-CQDs與菌落分離,然后將生長(zhǎng)有菌落的平板皿底放入便攜式熒光成像儀中,獲取稀釋梯度為10-(p+1)的n個(gè)菌落平板的熒光平板圖像,記為P1-1、P1-2、P1-3、……、P1-n ,n為大于零的整數(shù);同理獲取n個(gè)稀釋梯度為10-(p+2)的熒光平板圖像P2-1、P2-2、P2-3、……、P2-n,獲取菌液稀釋梯度為10-(p+3)的熒光平板圖像P3-1、P3-2、P3-3、……、P3-n,……,獲取稀釋梯度為10-(p+i)的熒光平板圖像Pi-1、Pi-2、Pi-3、……、Pi-n,總共得到了i×n個(gè)菌落熒光平板圖像,i和n為大于零的整數(shù);
如果菌落中有大腸桿菌,aptamer-CQDs會(huì)吸附在大腸桿菌菌落上,則大腸桿菌的菌落顯示熒光;如果菌落中沒(méi)有大腸桿菌aptamer-CQDs不會(huì)吸附在非大腸桿菌菌落上,同時(shí)非大腸桿菌菌落不顯示熒光;由此,實(shí)現(xiàn)了大腸桿菌菌落的快速和可視化識(shí)別;
步驟6、食品中大腸桿菌菌落的自動(dòng)計(jì)數(shù);
(1)對(duì)步驟5獲取的i×n個(gè)菌落熒光平板圖像進(jìn)行預(yù)處理,利用彩色圖像濾波函數(shù)imfilter對(duì)菌落熒光平板圖像進(jìn)行線性濾波,去除圖像中的噪聲;
(2)閾值分割:提取預(yù)處理圖像的藍(lán)(B)通道分量圖像,并將分量圖像灰度化,獲得B分量圖像的閾值T;利用閾值T對(duì)大腸桿菌菌落進(jìn)行分割,將高于閾值T的像素點(diǎn)定為1,低于閾值T的像素點(diǎn)定為0,得到了熒光平板菌落分割圖像;
(3)熒光平板菌落計(jì)數(shù):采用八鄰域邊緣跟蹤法檢測(cè)熒光平板菌落分割圖像的菌落邊緣,并利用連通區(qū)域計(jì)數(shù)法對(duì)大腸桿菌菌落計(jì)數(shù);對(duì)得到的i×n個(gè)熒光平板菌落分割圖像菌落計(jì)數(shù),計(jì)算每個(gè)稀釋梯度的大腸桿菌平均菌落數(shù),稀釋梯度為10-(p+1)的大腸桿菌平均菌落數(shù)記為N1,稀釋梯度為10-(p+2)的大腸桿菌平均菌落數(shù)記為N2,稀釋梯度為10-(p+3)的大腸桿菌平均菌落數(shù)為N3,……,稀釋梯度為10-(p+i)的大腸桿菌平均菌落數(shù)為Ni,其中,p為大于或等于零的整數(shù),i和n為大于零的整數(shù),并根據(jù)計(jì)算公式自動(dòng)計(jì)算出食品中大腸桿菌菌落總數(shù);
所述計(jì)算公式具體分為4種:
A、若只有一個(gè)稀釋梯度(10-(p+k))平板的大腸桿菌菌落數(shù)在20~200 CFU之間,則計(jì)數(shù)該稀釋梯度菌落平板上的大腸桿菌菌落數(shù),樣品中菌落數(shù)的計(jì)算公式為C(CFU/mL)=Nk /(V×10-(p+k)) ;其中,C為食品樣品中的大腸桿菌菌落數(shù),Nk為大腸桿菌菌落數(shù),10-(p+k)為稀釋梯度值,k為小于i的整數(shù),i為大于零的整數(shù),V為涂布平板時(shí)加入的食品樣品菌液體積,單位為mL;
B、若所有稀釋梯度菌落平板的大腸桿菌菌落數(shù)都小于20 CFU,即N1,N2,N3,……,Ni<20CFU,則計(jì)數(shù)最低稀釋梯度菌落平板上的大腸桿菌菌落數(shù),樣品中菌落數(shù)的計(jì)算公式為C(CFU/mL)=N1 /(V×10-(p+1)) ;其中,C為樣品中的大腸桿菌菌落數(shù),N1為最低稀釋梯度的大腸桿菌菌落數(shù),10-(p+1)為最低稀釋梯度值,V為涂布平板時(shí)加入的食品樣品菌液體積,單位為mL;
C、若某一稀釋梯度(10-(p+k))菌落平板的菌落數(shù)大于200 CFU,但是下一梯度平板上沒(méi)有大腸桿菌菌落,或者雖有大腸桿菌菌落但菌落數(shù)不在20~200 CFU范圍內(nèi),應(yīng)計(jì)數(shù)該稀釋梯度培養(yǎng)皿上的大腸桿菌菌落,食品樣品中菌落數(shù)的計(jì)算公式為C(CFU/mL)=Nk /(V×10-(p+k));其中,C為食品樣品中的大腸桿菌菌落數(shù),Nk為大腸桿菌菌落數(shù),10-(p+k)為稀釋梯度值,k為大于或等于零小于i的整數(shù),V為涂布平板時(shí)加入的樣品菌液體積,單位為mL;
D、若有2個(gè)連續(xù)梯度(10-(p+k)和10-(p+k+1))菌落平板的菌落數(shù)均在20~200 CFU之間,食品樣品中的菌落數(shù)的計(jì)算公式為C(CFU/mL)= (Nk+Nk+1) /(1.1V×10-(p+k));其中,C為食品樣品中的大腸桿菌菌落數(shù),Nk為低稀釋梯度大腸桿菌菌落數(shù),Nk+1為高稀釋梯度大腸桿菌菌落數(shù),1.1為計(jì)算系數(shù),10-(p+k)為低稀釋梯度的稀釋梯度值,k為大于或等于零小于i的整數(shù),V為涂布平板時(shí)加入的食品樣品菌液體積,單位為mL。
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