1.一種羊膜上皮細胞分離、培養的方法，其特征在于該方法是按以下步驟完成的：

一、羊膜組織分離和消毒：將羊膜自胎盤上剝離，然后用生理鹽水沖洗2～3遍，再在含有1％～3％頭孢哌酮的生理鹽水中浸泡3～10min；

二、羊膜上皮細胞分離：將羊膜裁剪成50～150cm²的塊狀，然后將裁剪后羊膜的上皮面朝上貼敷于無菌硝酸纖維膜上，向培養皿A中加入3～10mL生理鹽水，再將羊膜的上皮面朝下貼置在培養皿A中，靜置2～3min，獲得羊膜貼片；將羊膜貼片置于培養皿B中，加入10～30ml質量濃度為0.25％的胰酶-EDTA消化15～20min，然后封口膜封口后將培養皿放入恒溫搖床中消化，得到消化液，再加入2～5ml胎牛血清終止酶反應，然后去除羊膜貼片上團聚、黏連的羊膜上皮細胞，再將羊膜貼片轉移至裝有生理鹽水的培養皿C中，清洗貼壁的羊膜上皮細胞，得到清洗液，收集消化液和清洗液，經100目細胞篩過濾，獲得羊膜上皮細胞單細胞懸液；

三、羊膜上皮細胞純化培養：將步驟二獲得的羊膜上皮細胞單細胞懸液在4℃、1500rpm的條件離心5～15min，棄上清，然后加入含有表皮生長因子的低糖DMEM/F12培養基重懸細胞，混勻后按0.9～1.1×10⁵/cm²的接種量接種于培養瓶中，再置于37℃、CO₂體積濃度為5％的培養箱中培養，細胞融合率達到85％后，棄除非貼壁細胞，并用生理鹽水沖洗2次，然后加入質量濃度為0.05％的胰酶-EDTA消化，37℃消化2～5min，棄除消化液，再用生理鹽水沖洗1～2次，然后加入質量濃度為0.25％的胰酶-EDTA，在37℃條件下消化3～6min，再加入FBS終止酶反應，收集消化液，將消化液在4℃、1500rpm旋轉震蕩的條件下離心5～15min，棄上清，然后加入DMEM/F12培養基重懸細胞，得到高純度P0代羊膜上皮細胞單細胞懸液，即完成，其中步驟二所述的消化是在37℃，60～120rpm的條件下，消化15～20min。

2.根據權利要求1所述的一種羊膜上皮細胞分離、培養的方法，其特征在于步驟一所述的剝離方式為鈍性剝離。

3.根據權利要求1所述的一種羊膜上皮細胞分離、培養的方法，其特征在于步驟二所述的培養皿A、培養皿B和培養皿C為直徑是9～15cm的培養皿。

4.根據權利要求1所述的一種羊膜上皮細胞分離、培養的方法，其特征在于步驟二中用平頭鑷子、玻璃棒或細胞刮匙去除羊膜貼片上團聚、黏連的羊膜上皮細胞。

5.根據權利要求1所述的一種羊膜上皮細胞分離、培養的方法，其特征在于步驟三按1.0×10⁵/cm²的接種量接種于培養瓶中。

6.根據權利要求1所述的一種羊膜上皮細胞分離、培養的方法，其特征在于步驟三所述的含有表皮生長因子的低糖DMEM/F12培養基中表皮生長因子的終濃度為10ng/ml。